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Cell Counting Kit-8 (CCK-8)

 Catalog No. K1018

用于細胞增殖和細胞毒性試驗

Description

我們的產(chǎn)品Cell Counting Kit-8（CCK-8）相比以前的方法為細胞數(shù)測定和細胞增殖/毒性檢測提供了更方便和靈敏的方法。試劑盒使用了一種高水溶性的四唑鹽，WST-8，它在電子耦合試劑存在下還原產(chǎn)生水溶性formazan形式的染料。由脫氫酶產(chǎn)生的formazan的量與活細胞的數(shù)量呈直接的線性關系。CCK-8的檢測靈敏度高于其他方法，如MTT，XTT，MTS或WST-1等。

CCK-8法的優(yōu)勢

Features

比MTT，MTS或WST-1更敏感

對細胞無毒性

步驟更簡單，無需有機溶劑

穩(wěn)定的試劑，即用型

質量控制

Protocol

1.簡介

相比以前的方法如 MTT 檢測，Cell Counting Kit-8（CCK-8）為細胞數(shù)測定和細胞增殖/毒性測

定的研究提供了更方便和靈敏的方法。我們使用了一種高水溶性的四唑鹽，WST-8

[2-(2-methoxy-4-nitrophenyl)-3-(4-nitrophenyl)-5-(2,4-disulfophenyl)-2H-tetrazolium,monosodiu

m salt]，它在電子耦合試劑存在下還原產(chǎn)生水溶性 formazan 形式的染料，如 Figure. 1 所示。

Figure.1 WST-8 和 WST-8 formazan 結構

我們的產(chǎn)品 CCK-8 已經(jīng)與電子耦合試劑混合，是即用型。WST-8 可被活細胞中豐富的脫氫酶

還原，轉化為 formazan 形式，這是一種可溶于培養(yǎng)基的橙色染料（Figure. 2）。脫氫酶產(chǎn)生

的 formazan 的量與活細胞的數(shù)量呈直接的線性關系。

Figure.2 檢測原理

CCK-8 試劑盒為細胞增殖和細胞毒性檢測中測定活細胞數(shù)提供了靈敏的比色檢測。以往的研

Protocol

究表明，CCK-8 的檢測靈敏度高于其他四唑鹽，如 MTT，XTT，MTS 或 WST-1。由于 WST-8

formazan 是水溶性的，因此不再需要添加 DMSO 等有機溶劑。WST-8 formazan 在 450nm 處

的吸光度與培養(yǎng)基中活細胞的數(shù)量呈線性關系，活細胞數(shù)可以使用對應的吸光度值和標準曲

線確定。CCK-8 檢測也可以代替[3H]-thymidine 摻入檢測。

2.需要的的設備和材料

酶標儀 (450 nm 濾光片)

96 孔板

10 μl, 100-200 μl 多通道移液器

細胞 CO2培養(yǎng)箱

3.細胞活性檢測

3.1. 將細胞懸液（100 μl /孔）接種在 96 孔板中。在潮濕的培養(yǎng)箱中預培養(yǎng)一定時間（例如，

在 37℃，5％CO2下）。

3.2. 向板的每個孔中加入 10 μl CCK-8 溶液。 注意不要向孔中引入氣泡，因為它們會干擾

O.D. 值檢測。

3.3. 將培養(yǎng)板放在培養(yǎng)箱中孵育 1-4 小時。

3.4. 使用酶標儀測量 450 nm 處的吸光度。

如果不立刻測量吸光度，可在每個孔中加入 10μl 1％w / v SDS 或 0.1 M HCl，蓋好并在室溫下

避光保存。24 小時內(nèi)不會觀察到吸光度變化。

4.細胞增殖/毒性檢測

4.1. 在 96 孔板中每孔接種 100 μl 細胞懸液（約 5000 個細胞/孔）。將板在潮濕的培養(yǎng)箱中預

培養(yǎng) 24 小時（例如，在 37℃，5％CO2下）。

4.2. 向孔中加入 10 μl 不同濃度的待測物質。

4.3. 將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱中孵育適當?shù)臅r間長度（例如，6, 12, 24 或 48 小時）。

4.4. 向板的每個孔中加入 10 μl CCK-8 溶液。 注意不要向孔中引入氣泡，因為它們會干擾

O.D. 值檢測。

4.5. 將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱中孵育 1-4 小時。

4.6. 在讀取平板之前，可以在搖床上溫柔的混勻。然后使用酶標儀測量 450 nm 處的吸光度。

如果不立刻測量吸光度，可在每個孔中加入 10μl 1％w / v SDS 或 0.1 M HCl，蓋好并在室溫下

避光保存。24 小時內(nèi)不會觀察到吸光度變化。

5.數(shù)據(jù)分析

統(tǒng)計分析有幾種方法，您可以選擇使用 O.D.值或細胞數(shù)量，我們提供其中一種方法。

細胞存活率（％）= [（As-Ab）/（Ac-Ab）]×100

抑制率（％）= [（Ac-As）/（Ac-Ab）]×100

As =實驗孔吸光度（含有細胞，培養(yǎng)基，CCK-8 和待測化合物的孔的吸光度）

Ab =空白孔吸光度（含有培養(yǎng)基和 CCK-8 的孔的吸光度）

Ac =對照孔吸光度（含有細胞，培養(yǎng)基和 CCK-8 的孔的吸光度）

Protocol

6.制作標準曲線

6.1. 細胞計數(shù)板計數(shù)細胞懸液中的細胞數(shù)

6.2. 使用培養(yǎng)基，等比稀釋細胞懸液為一個濃度梯度，通常需要 5-7 個濃度梯度，每組幾個

復孔。然后接種細胞。（注意每孔的細胞數(shù)量。如果您將細胞懸液稀釋在管中，在加入培養(yǎng)

板的孔之前，請小心再次混勻細胞。每孔中細胞懸液的體積應該是一致的。）

6.3. 培養(yǎng)直至細胞貼壁（通常 2-4 小時），然后每 100 μL 培養(yǎng)基加入 10 μL CCK-8。繼續(xù)孵育

1-4 小時，用酶標儀測量 450nm 處的吸光度。制作出一條以細胞數(shù)為 X 軸坐標，O.D.值為 Y

軸坐標的標準曲線。

可以基于該曲線確定待測樣品的細胞數(shù)。使用此標準曲線的先決條件是培養(yǎng)檢測條件相同。

7.注意事項

7.1. 確保藥物和 CCK-8 均勻分布在培養(yǎng)基中。

7.2. 細胞增殖越多, 顏色越深; 細胞毒性越強，顏色越淺。

7.3. 對于貼壁細胞，每孔至少需要 1000 個細胞（100 μl 培養(yǎng)基）。對于白細胞，由于靈敏度

較低，每孔至少需要 2500 個細胞（100 μl 培養(yǎng)基）。推薦的 96 孔板每孔最大細胞數(shù)為 25000.

如果使用 24 孔或 6 孔板進行該檢測，請計算相應的每孔的細胞數(shù)，并調整 CCK-8 的體積，

使其為每孔總液體體積的 10％。

7.4. 因為 CCK-8 測定是基于活細胞中的脫氫酶活性，影響脫氫酶活性的條件或化學物質可能

導致實際活細胞數(shù)與使用 CCK-8 測定活細胞數(shù)之間有差異。

7.5. WST-8 可能與還原劑反應生成 WST-8 formazan。如果使用還原劑 (例如一些抗氧化劑)會

干擾檢測。如果待檢測體系中存在較多的還原劑，需設法去除。

7.6. 孵育 2 小時后，背景 O.D.值一般為 0.1-0.2 單位。

7.7. 注意不要在孔中引入氣泡，因為它們會干擾 O.D.值。

7.8. 如果您想對 CCK-8 溶液進行滅菌，請使用 0.2 μm 的膜過濾溶液。

7.9. 孵育時間因孔中細胞的類型和數(shù)量而異。通常，白細胞著色較弱，因此可能需要較長的

孵育時間（長達 4 小時）或大量細胞（~105細胞/孔）。

7.10. 如果細胞懸液中存在高濁度, 測量并減去樣品在 600nm 或更高波長的 O.D 值。

7.11. CCK-8 不能用于細胞染色。

7.12. 培養(yǎng)基中的酚紅不會影響實驗結果，酚紅的吸光度可以在計算時，通過扣除空白孔中

本底的吸光度而消去，因此不會對檢測造成影響。

7.13. CCK-8的毒性非常低，在CCK-8測定完成后，相同的細胞可用于其他細胞增殖測定，例如

結晶紫測定，中性紅測定或DNA熒光測定。（除非細胞極為稀少，不推薦。）

7.14. 該試劑盒可用于大腸桿菌，但不能用于酵母細胞。

7.15. 在讀取平板之前，您可以在搖床上輕柔混勻。

7.16. 我們建議將細胞接種在靠近培養(yǎng)板中央的孔中，最外圍一圈孔中的培養(yǎng)基容易蒸發(fā)，

可以用PBS，水或培養(yǎng)基填充這些孔。

7.17. 如果您沒有 450 nm 濾光片。您也可以使用吸光度在 430 和 490 nm 之間的濾光片, 450

nm 濾光片具有最佳靈敏度。

7.18. 測量 450 nm 處的吸光度，如果您需要進行雙波長測定，作為參考波長可以測定 650 nm

處的吸光度。

7.19. 藥物中金屬離子的存在可能會影響 CCK-8 的靈敏度。終濃度為 1 mM 的氯化亞鉛、氯

化鐵、硫酸銅會抑制 5% 、15% 、90% 的顯色反應，使靈敏度降低。如果終濃度是 10 mM

的話，將會 100% 抑制。

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